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一次过程生成多个液滴的方法

szwhchip 来源:汶颢 作者:汶颢 2024-07-25 15:43 次阅读
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滑动芯片
Ismagilov 实验室发明了一种滑动芯片(SlipChip)装置(图 2A), 可用于多路情况下的各种生化反应,而不依赖于泵和阀门。 该装置由上下两块紧密接触的玻璃板构成, 底板上具有微孔阵列及微管道, 顶板上具有与底板相对应的微孔阵列。 当顶板微孔与底板微管道对齐时, 该结构连接成一条连续的流体通道。 实验时, 在底板微孔中预先加入试剂, 盖上顶板, 形成流体通道, 向通道中注入样品, 之后滑动芯片使两块板的微孔对齐, 液滴混合, 发生反应。 SlipChip 具有消耗试剂少、 不易交叉污染、 多路反应可同时进行等优点。 已有研究将滑动芯片法应用于稀有细胞的筛选和分析, 并提出了微流体的随机限制的概念, 该工作将有助于拓展微流体随机限制在人类疾病诊断和环境测试等领域的应用前景。 滑动芯片法在单细胞遗传分析的所有阶段亦有广阔的应用前景, 包括细胞富集和捕获、单细胞划分和操作以及检测和分析。 通过滑动芯片法还能控制液滴形状和体积,在一个液滴中生长出一个晶体, 进而实现蛋白质单晶体的制备。 另外, 滑动芯片法在生物分析传感器的亚皮摩尔检测极限解决方案方面亦有应用。 在合成其它难以获得的新功能材料和结构, 如研究脂质和聚合物膜的功能和性质, 以及在液-液界面上执行反应等过程研究方面, 滑动芯片法也有所进展。 有研究者研发出基于滑动芯片法的全自动、低成本和手持的数字 PCR平台, 并有望应用于恒温核酸扩增方法等生物监测领域。如将滑动芯片法与其它微流体技术整合, 可进行大范围的重复样品生物分析工作, 包括快速识别血液等复杂生理基质中的病原体、单分子核酸分析。 在 SlipChip 的基础上, 发展出了一种新的可拓展性平台, 利用溶液的表面张力实现流体输送、混合、维持计量体积以及生物分子捕获和释放等。 但是, 由于采用了加工成本相对高的玻璃材质制作芯片, SlipChip 方法可能导致费用增加; 另外, SlipChip 方法比较适合进行一些特定的生化反应, 单独作为液滴制备方法使用并不能体现该方法的优势。

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液滴裂分法制备飞升级液滴
Li 等提出了一种制备体积在飞升级的液滴的方法(图 2B),可将液滴分裂成均匀的小体积的微液滴阵列。 该方法通过在带有亲水性区域的疏水性硅板上滑动液滴, 实现 pL ~ fL 级均匀微液滴的可控制备。 系统地讨论了影响产生的微液滴体积的关键因素, 包括亲水性区域大小、接触力以及液滴与疏水硅板之间的相对滑动速度。该方法能提供高通量且体积均匀的微液滴, 具有简便、高效、低成本的优势, 适合应用于细胞分析, 特别是生成单细胞阵列; 此外, 这种方法也被用于构建应用在微重力环境下的生物传感平台, 并实现了对葡萄糖、钙和蛋白质等典型标志物的检测。 Guo 等利用表面润湿性方法实现了对化学和生物分子的超灵敏检测, 有望进一步用于分析化学、分子诊断和环境监测等领域。体积在 fL 级别的液滴阵列是光操作、传感和高通量诊断等技术中重要的影响因素, 已有液滴体积可调的二维液滴阵列应用于多体积数字 PCR。 另一方面,fL 级液滴制备方法能够在有机溶剂中实现小型化和平行的高通量筛选, 并已被用于光子操纵的可调节纳米透镜阵列。
基于界面瑞利—泰勒不稳定性的液滴生成法
Marthelot 等从涂料容器的盖子上粘附涂料的现象受到启发, 利用液膜的不稳定性生成下坠液滴(图 2C)。作者在一个圆盘上倾倒一薄层硅胶液膜,在液膜固化的同时反转圆盘, 倒置几分钟后, 在重力和表面张力的共同作用下, 液体硅胶会自然形成不规则的下坠状液滴阵列。 通过使用离心机还可以在一定范围内改变液滴大小, 旋转的速度越快, 生成的液滴越小。这种方法巧妙地将通常需要克服的界面不稳定性这一缺点转变为一种可以大规模生成微液滴阵列的途径, 对环境和设备的要求也很低, 在柔性仿生结构制备方面具有应用前景。 但由于材料需经历由液态转变为固态的过程, 目前只使用了硅橡胶作为实验对象, 基于其它材料(如蜡、熔融玻璃、金属等)的结构制备还需要进一步研发。
一次过程生成一个液滴的方法类型
顺序操作液滴阵列系统
浙江大学方群课题组提出了顺序操作液滴阵列系统(图 3A), 可自动完成对超微量(pL ~ nL)液滴的多步操控。 第一代 SODA仪器由注射泵、毛细管探针、承载样品的芯片和孔板以及一个可以在 x-y-z 方向移动的平台组成。 在此基础上, 第二代 SODA 仪器增加了 CCD 成像系统和探针的自动定位程序, 并将注射泵集成到仪器中。

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SODA 系统可实现液滴的定量、液滴阵列的生成、液滴的定位与移动、液滴的分裂(取样)与融合(加入试剂)等操作, 已被成功应用于高通量药物筛选、蛋白质结晶条件的筛选、数字 PCR、单细胞分析、细胞迁移、细胞共培养等研究中, 并实现了与电喷雾质谱、高速毛细管电泳和色谱等系统的分析联用。
界面打印液滴生成法
Xu 等提出了一种界面打印液滴生成法, 利用毛细管连续输出水相, 并在油-气界面处高频振动, 以及油-气界面表面张力的周期性切割作用, 可连续快速生成大量 pL ~ nL 级体积可控的单分散液滴(图 3B)。 XiE 无需借助微加工技术, 只需要一台注射泵和一台控制毛细管按固定频率振动的电磁振动器, 具有低成本的优势, 适合常规实验室及非专业人士使用。 作者使用 XiE 系统进行数字等温扩增(dLAMP), 并将其应用于 H5 亚型禽流感病毒的快速定量检测。与此类似, 吴必成等设计了一种基于超声振动的微液滴生成装置, 可生成微米级的微液滴。该装置利用控制器驱动直线超声电机高精度移动, 通过滑台推动注射器, 在喷嘴尖端生成微液滴, 之后利用压电振子和喷嘴的振动, 使附着在尖端的液滴克服黏性力脱离尖端并落在一定范围内。实验以蒸馏水为对象, 通过该装置成功生成了半径小于 40 滋m 的液滴。 该装置结构简单, 可将液滴生成至特定区域内, 应用于多种液体微米级液滴的生成。
利用旋转的毛细管生成液滴的方法
Chen 等提出了一种利用旋转的毛细管生成液滴的方法, 可生成 1 pL ~ 100 nL 的油包水液滴。 装置由伺服电机、偏心轮、负载平台、注射泵、毛细管和离心管等部件构成(图 3C)。毛细管管口经过疏水处理,浸入已预装在离心管中的油相液面以下, 注射泵驱动毛细管中的水相进入油相, 控制毛细管转动, 利用相界面的阻力和剪切力产生液滴。 液滴产生和收集在离心管中, 能够避免样品的污染和损失, 有利于进行单细胞分析。 通过采用由多根毛细管构成的阵列, 能够实现高速和高通量的液滴生成。使用这种方法实现了单细胞的全基因组扩增。 在此基础上, 他们还发展了基于惯性力的液滴生成方式, 利用离心机作为惯性力的产生装置, 水在惯性力的作用下通过微通道产生微液滴, 被离心管收集。 这种方法具有样品无残留、生成的液滴大小均匀、高速和高通量等优势, 而且能够实现在低温下产生液滴。 他们用产生的液滴进行了数字 PCR 测试, 并与商业化的仪器进行比较, 证明了这种方法的有效性和便捷性。 Tang 等利用与 SiMPLE 类似的原理和装置, 使用一个旋转的圆锥台, 通过外加电场控制液滴大小, 实现了液态金属微液滴、固体水凝胶颗粒和纤维以及液态金属核鄄水凝胶壳微液滴的制备。
超疏水吸液器对微小液滴的可控制备
Guo 等利用超疏水网与气体负压系统, 制备了一种可对液滴进行快速操控的超疏水“吸液器冶(图 3D)。 常规状态下, 液滴难于粘附在超疏水表面而可在其表面上自由滚动。 当在超疏水网的另一侧施加一个可控的负压时, 由于内外压差作用, 液滴将被紧紧地吸附在超疏水网上。 该装置有一弹性开关设计, 用于控制负压的通断, 进而控制液滴的捕获和释放。 负压的施加实现了超疏水表面对液滴的粘附力的高度可控, 从而实现了微小液滴的制备和操纵。利用该超疏水吸液器, 课题组精确地制备了一系列体积在 0. 1 ~ 3. 0μL范围内的微小液滴, 并通过弹性开关实现了对简单液滴反应的快速操控。超疏水吸液器可作为典型的以微液滴为基础的反应和操控的基础装置, 这为解决微小液滴制备及操控的难题提供了新方式, 并且满足了液滴微反应器、微流体和液体输送领域的广泛需求。
手持式数字移液器打印纳米级液滴
Mao 等提出了利用手持式数字移液器(图 4A)的一种液滴生成方法, 该方法在传统的手持式吸液管基础上, 加装了一次性微流控芯片, 形成手持式的数字移液器。移液器操作时由可编程的电磁致动器驱动, 通过一个小型打印装置对装有液体的微流控芯片进行敲击, 使之生成液滴。 与一般基于微流控芯片的液滴生成方法不同, 该方法可任意选择液滴打印位置, 并根据需要定量生成液滴。 新型移液器兼具传统移液器技术与微流控打印技术的特点, 可用于nL 级液滴的可控生成, 并可以对单个液滴进行吸取与分配等精准操作。 该装置具有高分辨率、高精度、低操控误差、手持方便易用等优势, 可广泛用于各种高精度液体操控实验, 大大节省试剂用量, 且避免了误差积累。

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高频超声波微液滴制备技术
He 等成功研发了一种“高频超声波微液滴制备技术冶 (图4C)。 利用超高频声谐振器在固液界面上产生高度局部化且强大的作用力, 推动液体产生稳定而尖锐的液针, 并通过瞬时接触进一步将液滴输送到目标基板表面。 这种方法介于接触法和非接触法之间,因此避免了传统方法的一些问题(如喷嘴堵塞或卫星点)。 该方法可通过改变目标衬底的疏水性、谐振器尺寸、射频信号强度及射频信号持续时间来控制生成液滴的尺寸, 一般可生成的液滴直径在 10-6~10-4 m, 体积可控制范围在 10-12~ 10-9L 之间。 利用高频超声波微液滴制备技术能够在玻璃和柔性基质上实现高质量的DNA和蛋白质微阵列制备。并且由于光斑的大小可以精确地控制在 10-6 m(体积上为 10-12L), 且与金属氧化物半导体(CMOS)的兼容性互补, 此技术容易应用于生物芯片的制作, 适用于无机、有机、生物油墨等各种不同的材料。 此外, 在其它基于液滴的应用方面也具有很大潜力。
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审核编辑 黄宇

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