微流控芯片在显微镜下追踪细胞群体的动力学-电子发烧友网

人工构建基因回路有两种常用的策略。第一种是基于理论设计的“即插即用”模式，研究者利用已被定量刻画的基因元件，结合理论计算模型来构建基因回路，以使之产生特定功能。第二种则是基于高通量筛选的定向进化，或“突变-筛选”模式，在此模式下，研究者往往需要对回路中重要的原件构建规模庞大的突变体文库并随后进行筛选，以获得所需的表型。

对于后者而言，尽管大规模的建库-筛选技术近年来已经得到了长足的发展，然而对于一些复杂的表型，特别是涉及到时间依赖的动力学行为时，同时记录大规模突变体库的动力学表型是困难的。近期，美国加州大学圣地亚哥分校Jeff Hasty课题组在Cell Systems上发表以“Design， mutate， screen： Multiplexed creation and arrayed screening of synchronized genetic clocks”为题的研究论文，介绍了其新开发的微流控芯片，基于此芯片可以在显微镜下同时记录大量细胞群体的动力学行为。

图1 Hasty实验室开发的微流控芯片，可以同时追踪48个细胞群体的动力学。

应用这一微流控系统，研究人员对实验室已有的群体振荡基因回路进行了突变-筛选。该基因回路利用细菌的群体感应系统，通过AHL分子进行细胞间通讯，使细胞群体以共同的节律表达细胞裂解相关蛋白，从而产生群体的同步化振荡（如图2所示）。研究人员首先对裂解蛋白的核糖体结合位点（RBS）序列中的五个位点进行了突变，并随机选取其中24个分别用96孔板和微流控系统进行筛选。结果表明，在96孔板中生长的细菌群体无法表现出规则的振荡行为，而在微流控筛选系统中则可以表现出周期性振荡。研究人员进一步定量测定了不同突变体在不同条件下的振荡周期和振幅，并展示这一系统可以用于精确调整振荡系统的动力学性质。

图2 应用微流控系统规模化筛选具有不同振荡周期的菌株

接着，研究人员挑选筛选所得的两个菌株（pSpSLC₀和pSpSLC₁₀，以下简称0号和10号）进行了深入分析。相比而言，10号菌株的振荡更慢，振幅更高。研究人员首先在无反馈的菌株内刻画了两种RBS的强度，并画出了两种RBS下细胞裂解对AHL的剂量响应曲线，发现0号菌株（快振荡）的EC50要显著小于10号菌株（慢振荡）的EC50值，这一结果与数学模型定性地吻合。

图3 更慢的振荡周期对应更强的AHL响应

此外，研究人员应用前任发展的RBS计算器对这两个筛选得到的RBS序列进行了强度预测，但结果显示二者并没有明显区别（在误差精度范围内）。研究人员分析产生这一结果原因可能在于下游裂解蛋白浓度与细胞裂解之间的非线性关系，即微小的RBS强度改变也可能带来细胞裂解水平的很大变化。这进一步说明了规模化文库筛选的重要性——即便是在很大程度上可以被理性设计的基因回路中，也会有潜在的、未被充分考虑的复杂性。

最后，研究人员应用这一筛选平台构建了一个不依赖于细胞裂解的新型群体振荡回路。该回路由简单的负反馈构成：细菌表达产生的AHL可以诱导tetR的表达，而tetR又可以抑制AHL的表达。初始构建的菌株并未表现出明显的振荡特征，研究人员随后对tetR的RBS构建了突变体文库，并选择其中在分批培养条件下具有脉冲式动力学现象的菌株进行了微流控平台筛选，最终得到了具有稳定振荡表型的菌株。相比初始菌株而言筛选得到的菌株明显具有更稳定的振荡周期。